1 材料与方法
本研究中的血清,分别由山东银香伟业生物工程有限公司、 Gibco 公司生产,并作对照。
1.1 猪卵巢卵母细胞的体外成熟
从屠宰场收取猪卵巢,用 20G注射针从直径2 - 8mm的有腔卵泡中抽取卵丘-卵母细胞复合体(Cumulus-Oocyte Complex, COC)。 以TCM199+10IU/mL PMSG,hCG+0.57mmol/L 谷氨酰胺+15%FCS和10%猪卵泡液(pFF)为猪卵母细胞体外成熟培养液。COC首先在体外成熟培养液中培养20~22h(39℃,5%CO 2 ),随后置于无激素(PMSG,hCG)的上述培养液中继续培养20~22h,用透明质酸酶(1 mg/mL),结合微玻璃管反复吹吸,除去卵丘细胞; 剖解方法收集小于2 mm卵泡中的卵母细胞。
1.2 成纤维细胞的准备
从仔猪耳上取一小块组织( 0.5cm×0.5cm×1.0cm)。在HBSS液中漂洗5次,刮去毛发,进一步剪成小块,在不锈钢网上过滤,37℃,0.25%胰蛋白酶中消化10min,500g离心10min,弃取上清液。沉淀的成纤维细胞转移至25ml细胞培养瓶。培养液用TCM199 penicillin(100 IU/mL) , Streptomycin(100 μg/mL) 和 15% FBS;传代至4 - 8代用作供体细胞,一部分细胞冷冻保存;使用前5天以血清饥饿法(5% FCS)将供体细胞诱导至G0或G1期。实验前数分钟用胰酶分散,得到单个细胞。
1.3 卵丘细胞的准备
将 COC置于含0.1%透明质酸酶的培养液分离卵丘细胞,700g离心5min, 以TCM199清洗数次。随后在35mm培养皿中进行体外培养,培养液用TCM199加 15%FBS;传代至2 - 4代用作供体细胞,一部分细胞冷冻保存;使用前5天以血清饥饿法(5%FCS)将供体细胞诱导至G0或G1期。实验前数分钟用胰酶分散,得到单个细胞。
1.4 去核、融合与激活
将获取的卵母细胞尽快置于含 ( fatty acid-free BSA 3 mg /mL 和 cytochalasin B 5 μ g /mL )的改良TCM199中。以固定管吸住卵母细胞,用尖端去核管直接插入透明带内吸取第一极体及其下方的染色质。去核后卵母细胞置于含 5 μ g /mL Hoechst33342 的 TCM199中,39℃孵育15 - 20min,紫外光下检测去核效果。通过去核时在透明带上留下的孔,将成纤维细胞、卵丘细胞(20 - 25 μm)注入卵周隙中,供核细胞与卵母细胞的接触面与电极丝相平行,细胞融合在含有0.3mol/L甘露醇,0.4mol/LMgSO 4 , 0.5mol/L CaCL 2 和3% BSA的融合液中进行,融合条件为:100 V /mm DC, 30 μs刺激一次[ Electro Cell Manipulator 2001 M (BTX, San Diego, CA, USA)] ,电 刺激后的重构卵在 NCSU-23(加4 mg/ mL BSA)培养液中培养30min,在立体显微镜下观察融合结果。
将重构卵胚置于 10μmol/L 钙离子载体 A23187 (Sigma)的 NCSU-23培养液中培养5min 或1个直流脉冲(125 V /mm, 70 μs),随后置于NCSU-23(含2mmol/L 6-DAMP 和4 mg /mL BSA)加10%胎牛血清,培养液中培养5h,培养条件39℃,5%CO 2 。所有的显微操作都在Leica显微操作系统下进行。
1.5 数据处理
所有的数据均用 X 2 统计进行分析,凡是 p < 0.05 为是差异显著, p < 0.01 为是差异显著。
2 结果
2.1 成纤维细胞重构胚和卵丘细胞重购胚的体外发育
表 1 成纤维细胞重构胚的体外发育
Table2 In vitro development of reconstituted porcine embryos after nuclear transfer using FC
供体细胞 Donor cell
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